利飛馳920190桿菌肽 BA 0.016-256說明書

利飛馳920190桿菌肽 BA 0.016-256說明書

利飛馳920190桿菌肽 BA 0.016-256說明書

說明

MIC 試紙條是測定抗微生物藥對微生物的低抑菌濃度(MIC)和檢測耐藥性機制的一種定量分析法。

MIC 試紙條是具有特殊功能*的紙條,這些試紙條用預定濃度梯度的抗生素浸漬,其濃度梯度為傳統 MIC 法的 15 個雙倍稀

釋液。

在試紙條的一側,指明了 MIC 標度(以 μg/mL 為單位)和抗微生物藥的標識代碼。

對 ESBL(廣譜 β-內酰胺酶)和 MBL(金屬 β-內酰胺酶)的檢測,雙側梯度攜帶適當的診斷試劑。

MIC 試紙條有多種可選配置。每種配置均以 10、30 和 100 次試驗的包裝供應。

包裝內容物

10次試驗盒含有 10張試紙條(逐個包裝于干燥劑封袋)和一份使用說明書。

30次試驗盒含有 30張試紙條(逐個包裝于干燥劑封袋)和一份使用說明書。

100次試驗盒含有 10個干燥封袋(各裝有 10張試紙條)和一份使用說明書。這種 100次試驗包也裝有一個存儲管。

方法原理

當 MIC 試紙條貼敷在接種的瓊脂表面時,預形成的抗微生物指數梯度立即輸送到瓊脂基質上。

在培養 18 小時或以上時間后,形成沿試紙條中心定位的一個對稱抑制性橢圓圈。MIC 是直接從標度上讀取的,以抑制性

橢圓圈邊緣與 MIC 試紙條條帶交叉點的 μg/mL 值表示。對耐藥性檢測方法,也可能觀察到其它生長/抑制模式。

組成

這些試紙條由高質量紙張制成,每個試紙條均以預定濃度梯度的抗生素浸漬,其濃度梯度為抗生素的 15個雙倍稀釋液。

收集和保存樣品低抑菌濃度(MIC)測定用菌落是由培養基取得的,培養基預先用棉簽以待檢樣品涂抹。如果是混合菌落,在接種之前必須純化細菌菌株。

試驗步驟

1.開啟封袋前,先將封袋恢復至室溫,以便盡量減少試紙條上出 現凝結。

2.用棉簽取 4-5 個良好分離的和形態學類似的菌落+培養基,使之在 5mL 適當懸浮培養基中懸浮。營養要求較高的微生物應懸浮在肉湯中,并在 15 分鐘內使用。

3.與適當的 McFarland 標準品對比濁度。

4.把無菌棉簽浸入肉湯培養基或其稀釋形式培養基中,使之靠試管壁擠壓,以除去多余的液體。

5.使之沿平板上所含的培養基表面拖動,以便獲得均勻的生長;吸收過量的水分吸收,確保該表面*干燥,再應用試紙條。

6.把試紙條貼敷在瓊脂表面上,令 MIC 標度向上,且試紙條的代碼面向平板的外部,用無菌鉗把它按壓在瓊脂表面上,確保

抗生素梯度的全部長度試紙均*接觸瓊脂表面。一旦貼敷,不得移動試紙條。

7.讓平板倒置,在對微生物適當的條件下進行培養。

8.把未用的試紙條放在包裝中附帶的試管上。